细菌和病毒中的“CRISPR-Cas系统”识别并破坏入侵的病毒序列。它是细菌和古细菌免疫系统，用于防止病毒感染。 2012年，CRISPR-Cas系统被认定为 基因组 编辑工具。从那时起，广泛的 CRISPR-Cas 系统被开发出来，并在基因治疗、诊断、研究和作物改良等领域得到应用。然而，由于脱靶编辑、意外DNA突变和遗传问题的频繁发生，目前可用的CRISPR-Cas系统在临床上的应用受到了限制。研究人员最近报告了一种新型 CRISPR-Cas 系统，可以靶向并破坏 mRNA 蛋白质 更准确地与不同的遗传疾病相关联，没有脱靶影响和遗传问题。它被命名为 Craspase，是第一个 CRISPR-Cas 系统 蛋白质 编辑功能。它也是第一个可以编辑 RNA 和 蛋白质。由于 Craspase 克服了现有 CRISPR-Cas 系统的许多限制，因此它有可能彻底改变基因治疗、诊断和监测、生物医学研究和作物改良。
“CRISPR-Cas系统”是细菌和古细菌针对病毒感染的天然免疫系统，可识别、结合和降解病毒基因中的序列以提供保护。它由两部分组成——第一次感染后从病毒基因转录而来的细菌RNA（称为CRISPR，它可以识别入侵病毒基因的目标序列）和相关的破坏者 蛋白质 称为“CRISPR相关 蛋白质 (Cas)”结合并降解病毒基因中已识别的序列，以保护细菌免受病毒侵害。
脆皮 代表“聚集的规则间隔的短回文重复”。它是转录的细菌 RNA，其特征是回文重复。
回文重复序列 (CRISPR) 首次在以下序列中发现： E。大肠杆菌 1987年。1995年，Francisco Mojica在古细菌中观察到了类似的结构，正是他首先将这些结构视为细菌和古细菌免疫系统的一部分。 2008年，首次通过实验证明细菌和古细菌的免疫系统的目标是外源DNA而不是mRNA。识别和降解病毒序列的机制表明，此类系统可以用作 基因组编辑。自 2012 年被认可为基因组编辑工具以来，CRISPR-Cas 系统作为一个牢固确立的标准已经取得了长足的进步 基因编辑 系统并已在生物医学、农业、制药行业（包括临床基因治疗）中得到广泛的应用1,2.
广泛的 CRISPR-Cas 系统已被识别，目前可用于监测和编辑 DNA/RNA 序列，用于研究、药物筛选、诊断和治疗。目前的CRISPR/Cas系统分为2类（Class 1和2）和1种类型（Type I至XI）。 XNUMX 类系统有多个 Cas 蛋白质 它们需要形成功能复合物来结合并作用于其靶标。另一方面，2 类系统只有一个大型 Cas 蛋白质 用于结合和降解目标序列，这使得 2 类系统更易于使用。常用的 2 类系统是 Cas 9 Type II、Cas13 Type VI 和 Cas12 Type V。这些系统可能会产生不良的附带影响，即脱靶影响和细胞毒性3,5.
基因疗法 基于当前 CRISPR-Cas 系统的临床应用受到限制，因为脱靶编辑、意外 DNA 突变的频繁发生，包括大 DNA 片段缺失以及在靶点和脱靶位点的大 DNA 结构变异，导致细胞死亡以及其他可遗传的问题。
Craspase（或 CRISPR 引导的 caspase）
研究人员最近报告了一种新型 CRISPER-Cas 系统，它是与类 caspase 相关的 2 类 III-E Cas7-11 系统 蛋白质 因此得名 Craspase 或 CRISPR 引导的 caspase 5 （半胱天冬酶是半胱氨酸蛋白酶，在细胞凋亡破坏细胞结构中发挥关键作用）。它在基因治疗和诊断等领域具有潜在的应用。 Craspase 是 RNA 引导和 RNA 靶向的，不参与 DNA 序列。它可以靶向并破坏 mRNA 蛋白质 更准确地与不同的遗传疾病相关，而不会产生脱靶影响。因此，通过mRNA或蛋白质水平的切割消除与疾病相关的基因是可能的。此外，当与特定酶连接时，Craspase 还可用于修饰蛋白质的功能。当其 RNase 和蛋白酶功能被移除时，Craspase 就会失活（dCraspase）。它没有切割功能，但与RNA和蛋白质序列结合。因此，dCraspase 可用于诊断和成像，以监测和诊断疾病或病毒。
Craspase是第一个显示蛋白质编辑功能的CRISPR-Cas系统。它也是第一个可以同时编辑 RNA 和蛋白质的系统。它是 基因编辑 函数的脱靶效应最小，并且没有遗传问题。因此，Craspase 在临床使用和治疗上可能比其他现有的 CRISPR-Cas 系统更安全 4,5.
由于 Craspase 克服了现有 CRISPR-Cas 系统的许多限制，因此它有可能彻底改变基因治疗、诊断和监测、生物医学研究和作物改良。 在临床试验中证明安全性和有效性之前，需要进行更多研究来开发可靠的递送系统，以精确靶向细胞中的致病基因。
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